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    为了在植物体内生产出分支化程度得到进一步提高的淀粉,从而改善淀粉的冻融稳定性,将大肠杆菌糖原分支酶(glycogen branching enzyme,glgB)基因融合到黑曲霉GASBD基因的5′-末端或3′-末端,并将合成的这两个融合基因转化到马铃薯栽培品种Desiree中。在本研究中,主要对glgB/GASBD融合基因以及glgB基因在马铃薯中的表达对淀粉分支程度的影响进行研究。

    1 材料与方法

    1.1材料

    1.1.1植物材料

    三个马铃薯转基因系列:分别为glgB-GASBD、GASBD-glgB和glgB转基因系列。

    1.1.2 酶与试剂

    反转录试剂盒购自Invitrogen 公司(美国);直链、支链淀粉标准品和异淀粉酶购自于Sigma公司(美国);β-巯基乙醇;氯仿;异丙醇;乙醇;TE缓冲液;Mini Trans-Blot System (Bio-Rad,美国);硝酸纤维素膜(Milliper公司,美国); TTBS缓冲液;TBS缓冲液;3,3'-二氨基联苯胺四盐酸。

    1.2方法

    1.2.1 转化植株的PCR检测

    通过CTAB法[4]提取转化植株和对照植株的叶片基因组DNA(叶片取自于70天的盆栽苗)。首先取100 mg 新鲜的马铃薯叶片,用液氮冷冻研磨成粉末,加入500µL 65℃预热的CTAB 抽提液(2% CTAB,1.4M NaCl,20 mM EDTA,100 mM Tris-HCl)和10µL β-巯基乙醇,轻轻混匀后放入65℃水浴保温30 min,加等体积的氯仿:异戊醇(24:1)混合液,进行混匀,在4℃,13 000g离心5 min,然后取300µL上清液以及加入300µL预冷的异丙醇,静置20 min,13 000g离心10 min,最后沉淀用70%乙醇清洗2次,置于室温干燥后,在30μLTE缓冲液中溶解。

    按照大肠杆菌glgB基因序列,用Primer 5.0软件设计一对特异性引物,引物序列分别是:5'–GGGATTCTTTAGCGGCGTCATTC–3' 和5'–ATCAGCACCGAGCGTTCTTTGTC–3' ,预期扩增片段大小为1720 bp。PCR反应体系是:基因组DNA 2μL,引物各1μL,2.5 mM dNTPs 2μL,10×PCR反应缓冲液2.5μL,Taq酶1μL,加双蒸水到25μL。PCR反应程序为:95℃ 4 min,95℃ 60 s,52℃ 45 s,72℃ 90 s,35个循环,72℃延伸10 min。文献综述

    1.2.2 半定量RT-PCR分析

    从所有转基因植株的块茎中提取总RNA[5],采用Thermo Scientific RevertAid First cDNA Synthesis Kit方法合成cDNA第一链,然后将新合成的cDNA第一链作为扩增模板,最后用Taq聚合酶进行PCR扩增。在检测转基因马铃薯中外源基因的mRNA积累量时,将非转基因的马铃薯作为阴性对照。

    对转基因马铃薯进行RT-PCR分析所使用的引物和转化植株的PCR检测一样。PCR反应体系是:cDNA第一链反应液2μL,引物各1μL,2.5mM dNTPs 2μL,10×PCR反应缓冲液2.5 μL,Taq DNA聚合酶1μL,加不含RNase的双蒸水至总体积25μL。PCR反应程序是:94℃预变性2 min;94℃ 30s;52 ℃ 45s;72℃ 90s,35个循环;72℃延伸10min。作为内参的马铃薯actin基因的引物为5'- GGAG来!自~751论-文|网www.751com.cn TCTGGCATCATACAT-3'和5'- GTTGGAAGGTACTTAAAGAAGCC-3',预期扩增片段长度为800 bp。PCR反应体系和glgB基因的扩增体系一样。PCR 循环参数是:94℃预变性2min;94℃ 30s,54℃ 45s,72℃ 60s,30次循环;72℃延伸10 min。

    1.2.3 马铃薯淀粉的提取

    将每个转基因株系的5株马铃薯植株的薯块混合后,取0.5kg马铃薯洗净,用小刀把皮削去,切成2到3 cm小块,然后用组织匀浆机把1 L含有0.1% Na2SO3的去离子水中进行匀浆,经4层纱布进行过滤后,用2 L含0.1% Na2SO3的去离子水冲洗滤渣。滤液于4℃静置12h后弃上清,淀粉沉淀用去离子水清洗三次后平放在滤纸上,最后将自然晾干的淀粉研磨成粉,则得到马铃薯淀粉。

    1.2.4 Western斑点杂交分析来!自~751论-文|网www.751com.cn

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