2 材料与方法
2.1 实验材料
5个马铃薯转基因株系:glgB-2、glgB-6、glgB-9、glgB-21、glgB-24和马铃薯对照Desiree。
2.2 实验方法
2.2.1马铃薯淀粉的提取
将每个转基因株系5株马铃薯植株的薯块混合后,取0.5kg马铃薯洗净后晾干,用钢丝球将皮搓去,切成2-3 cm小块,用1 L含0.1% Na2SO3的蒸馏水匀浆,4层纱布过滤。再用2 L含0.1% Na2SO3的蒸馏水冲洗滤渣,边冲洗边摇动滤布。滤液于4℃静止12h后倾去上清,将淀粉沉淀用蒸馏水洗三次。将淀粉平铺在滤纸上,自然晾干。将干燥的淀粉在研钵中研磨成粉,过100目筛,即得到马铃薯淀粉。
2.2.2 不同马铃薯转基因株系直、支链淀粉的分离
直、支链淀粉的分离纯化参照Lu等人[4]和Takeda等[5,6]的方法。具体步骤如下:
称取0.5 g马铃薯淀粉,加少量无水乙醇,使样品湿润,再加入 15 mL 0.5M NaOH,在沸水浴中搅拌 30 min,冷却,于 4 000×g 离心 10 min,去掉未分散物。用 2 M HCl 中和离心液,并加 10ml 体积比为1∶1丁醇-异戊醇,在沸水浴中加热搅拌 10 min,冷却至室温。移入冰箱内(2-4℃)静置 24 h,于 4 000×g 离心 20 min,沉淀物为粗直链淀粉,离心上清液为粗支链淀粉溶液。
将沉淀物全部移入饱和的 10 ml 正丁醇的水里,在沸水中加热至沉淀溶解,冷却至室温,置于 2~4℃冰箱中静置 2 h,于 4 000×g 离心 20 min,再将沉淀溶于正丁醇中,重复 2 次,离心得沉淀,用无水乙醇洗涤 2 次,于 50℃烘干,即得直链淀粉。
粗支链淀粉溶液加入 1 ml 辛醇,再加入 10 ml体积比为1∶1丁醇-异戊醇,在沸水浴中加热搅拌 10 min,冷却至室温,移入冰箱内(2-4℃)静置 48 h,于 4 000×g 离心 20 min,去掉沉淀物(残存直链淀粉),在离心上清液中加2倍体积无水乙醇,静置,离心,沉淀于 50℃烘干,即得支链淀粉。
2.2.3不同马铃薯转基因株系支链淀粉链长分布的测定
称取100 mg 分离的纯支链淀粉,加入2 mL0.5 mol/L NaOH后,置80℃水浴中加热搅拌10 min,冷却至室温后用1mL 1 mol/L HCl调整pH值至中性。然后加入2 mL异淀粉酶(5000U, 0.1mol·L-1醋酸钠缓冲液, pH 3.5),于40℃水浴中反应24 h后(期间不时混匀),置沸水浴中10min终止反应。凝胶层析采用Sephadex G-75 层析柱(2.6 cm×80 cm),用0.05 M NaCl (含0.02%NaN3)进行洗脱,洗脱速率为20ml/h。上样结束后即开始收集样品,每30 min收集1管,每管即10ml。 每管中的可溶性总糖的含量用苯酚-硫酸法测定[7],还原性糖的含量用用 3,5-二硝基水杨酸比色法(DNS法)进行测定[8],每管中的平均链长用每管的可溶性总糖与还原性糖的比值来表示。
2.2.4 不同马铃薯转基因株系淀粉糊透明度的测定源-自/751+文,论`文'网]www.751com.cn
参照文献[9,10] 的测定方法。准确称取0.2 g的淀粉样品于50mL的离心管中,加水定容至20mL,配成质量浓度为1g/100mL 的淀粉乳,于沸水浴中加热糊化并搅拌20 min,保持淀粉溶液体积不变,冷却到室温,以蒸馏水作为空白对照(透光率设为100%),在620nm波长下测定淀粉糊的透光率,重复3 次。
2.2.5 不同马铃薯转基因株系淀粉糊凝沉性的测定
参照文献[11]的测定方法。将100 mL 质量浓度为1g/100mL 的的淀粉糊放入量筒中, 在室温下静置, 24 h后记录沉降物的体积。以沉降物体积来表示糊的凝沉性质。
2.2.6 不同马铃薯转基因株系淀粉糊冻融稳定性的测定
称取1.8 g马铃薯淀粉样品于50mL离心管中,加蒸馏水定容至30mL(即配制成质量浓度为6 g/100mL的淀粉乳)。将淀粉乳于沸水浴中加热糊化并保30min(期间不时搅拌),保持淀粉糊的体积不变。冷却至室温,称取一定质量的淀粉糊(m1)于离心管中,置于-20℃的冰箱中冷冻24h 后,取出在室温下解冻,以3000 r/min的速度离心15 min,倾去上清液,称沉淀重(m2),计算析水率。每个样品重复三次。计算析水率(%)=(m1-m2)/m1×100。测定三次冻融循环的析水率[12,13]。