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王旭[21]等人在采用高效液相色谱法测定食品中的751椒素和二氢751椒素的实验中，先利用超声波辅助甲醇-四氢呋喃（1+1）提取样品中的751椒素和二氢751椒素，然后采用Agilent 1100高效液相色谱仪，在C18色谱柱(150×4.6mm，5μm)；流动相为甲醇：水(80:20)，流速为0.6ml/min的条件下，对751椒素、二氢751椒素标样和样品进行荧光检测(Ex=229nm、Em=320nm)。结果表明，751椒素含量在0.13～160mg/L之间，二氢751椒素含量在0.04～160mg/L之间；峰面积与待测物浓度呈良好的线性关系，相关系数为1；RSD为1.36%～4.79%，回收率在70.50%～100.07%之间。
谷岩[22]等人也对751椒中751椒碱和二轻751椒碱进行过深入研究。建立了一套以高效液相色谱为基础的检测方法。先对样品751椒用无水乙醇进行萃取处理。然后通过HPLC分离。在最佳色谱条件下：ZORBAX SB–C18柱(250 mm×4.6mm，5μm)；二极管阵列检测器(DAD)；检测波长280 nm；流动相采用甲醇：水（65:35）；流速为1.0 mL／min。751椒碱、二氢751椒碱的加标回收率分别为 94.1%～96.8% 、92.6%～95.0% ，测定结果的相对标准偏差小于2.0%（n=11）。该法实现了 25 min 内对751椒碱、二氢751椒碱的同时测定。
任召言[23]等人在其751椒精的精制及751椒素的HPLC测定的研究中，先通过物理化学性质对751椒油树脂进行精制，然后采用日本岛津LG-CA高效液相色谱仪，在supelcosil C18反相色谱柱（15cm X 6mm）下，通过waters900紫外可见检测器对其分离检测。流速为0.5ml/s，流动相水(含1% 磷酸):乙腈=60：40。其751物质洗出顺序为降二氢751椒素（NDC）、751椒素（C）、二氢751椒素（DC）、高751素（HC）和高二氢751椒素（HDC）。
赵仁邦[24]等人对751椒素进行过研究，他们采用高效液相色谱法，Hypersil BDS C18色谱柱进行分析，通过紫外检测器在280nm出检测。但对样品的前处理，他们使用的是甲醇超声溶解的。其结果，在采用甲醇：水（85:15）的流动相，流速0.6ml/min体系下，线性回归方程是Y=11.2 +7.97，相关系数为r=0.9999，样品的精密度RSD=2.6％，平均回收率是95.71％。
童庆宣[34]等人对快速测定751椒树脂油中751椒素含量进行研究，他们采用95%乙酸钠饱和乙醇溶液浸泡的方法简单处理树脂油，使用日本岛津的LC-4A型高效液相色谱仪，用甲醇：水：二氧751环：乙腈：2%高氯酸=50:30:11.8:8:0.2为流动相，流速1.2ml/min，室温，在紫外光波长280nm下检测，可在8分钟内分离751椒素和类751椒素。
孙进平[35]等人使用RP-HPLC法对751椒碱进行研究，采用日本岛津产高效液相色谱仪，YMS ODS色谱柱，流动相甲醇：水（0.1%磷酸）=75:25，流速0.6ml/min，柱温40℃，检测波长280nm的色谱条件进行检测。其研究结果，既可以定量分析提纯的751椒样品，也可以直接检测未提纯的751椒样品。
用HPLC方法检测天然751椒碱的色谱条件对比：
表1 色谱条件对比
参考文献 色谱柱 流动相 751椒素出峰时间/min
18 Kromasil-C18 甲醇-水（80：20） 6.5
27 Kromasil C18 乙腈：水(50：50) 14
20 Agilent ODS 甲醇：四氢呋喃（1:1） 18
21 C18 甲醇：水(80:20) 4.6
22 ZORBAX SB–C18 甲醇：水（65:35） 15
23 supelcosil C18 水(含1% 磷酸):乙腈=60：40 15
24 Hypersil BDS C18 甲醇：水（85:15） 5